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蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)一直是蛋白质组研究中最重要的内容之一,现今也有多种方法可在蛋白质组规模上分析PPI,但研究内源性细胞膜上的相互作用蛋白仍然是一个挑战,主要原因有两个:1. 跨膜蛋白通常丰度较低;2. 膜蛋白之间的相互作用通常是瞬时且较弱的。通常的方法包括亲和纯化质谱(AP-MS),膜蛋白酵母双杂交等,这些方法的局限在于:过表达带来生理性互作的改变;酵母系统难以反映哺乳动物真实生物过程;以及为了去除非特异性结合,使用严格的洗脱步骤,可能导致弱相互作用的丢失。

2024年9月3日,上海科技大学水雯箐课题组联合庄敏课题组,在Nature子刊《Nature Chemical Biology》发表论文”Endogenous cell membrane interactome mapping for the GLP-1 receptor in different cell types“, 该文章开发了一种基于配体的邻近标记和DIA定量蛋白质组的联合策略,不需要过表达,也不需要抗体,直接检测天然细胞中的互作蛋白。

方法应用:捕获糖尿病药靶——GLP-1受体(GLP-1R)的内源性细胞膜相互作用蛋白;
细胞类型:大鼠胰腺 β 细胞系(INS-1E)和人神经元细胞系(SK-N-SH)
背景知识:什么是邻位标记技术?基本原理——
  • 标记酶的融合:将一种邻位标记酶(如过氧化物酶,PEX)基因融合到目标蛋白质的特定区域。
  • 酶催化反应:加入特定的酶底物(如生物素-酚),酶会催化底物与邻近的蛋白质发生化学反应,使其被标记。
  • 标记捕捉:通过后续的亲和捕捉步骤(如中性亲和素),结合质谱蛋白质组技术,可以分离和分析那些与目标蛋白质相邻的标记蛋白质。

本研究实验流程与膜蛋白捕获方法

  • 探针制备:首先,将GLP-1肽与PEX融合,制备成邻位标记探针(GLP-1–PEX)。

  • 处理细胞:将表达GLP-1R的活细胞与GLP-1–PEX探针处理。探针中的GLP-1肽与GLP-1R结合并激活受体,引发信号反应。

  • 邻位标记:在细胞处理期间,添加底物生物素-酚和H2O2,在PEX催化下,底物与邻近蛋白发生反应,使其被标记。

  • 捕获膜蛋白:由于GLP-1–PEX探针主要靶向GLP-1R的胞外配体结合位点,并且生物素-酚与细胞孵育时间非常短(1分钟),从而减小了膜穿透的可能,因此,标记主要发生在细胞膜上,该方法能够有效地捕获与GLP-1R密切相互作用的膜蛋白。

该研究设计了两种探针,一个是将合成的GLP-1-生物素与链霉亲和素-辣根过氧化物酶(HRP)进行孵育,形成GLP-1-HRP探针。另一个是将工程化的抗坏血酸过氧化物酶(APEX2)与GLP-1的C末端融合,通过重组表达和纯化得到GLP-1-APEX2探针。经过一系列实验,发现GLP-1-APEX2探针具有更高高特异性的受体结合能力,更有效地激活下游信号,并能显著诱导受体内吞。因此,后续采用GLP-1-APEX2探针用于绘制天然细胞中GLP-1R的细胞膜互作蛋白!
一、在两种细胞类型中绘制内源性细胞膜互作蛋白

研究方法:

1.邻近标记:细胞样本使用探针处理5 min。然后在含有生物素-酚和H2O2的培养基中孵育1分钟,以实现邻近蛋白标记。细胞设置3组处理,分别为GA组(GLP-1–APEX2探针)、对照组(PBS)、探针竞争对照组(GA+GLP-1),每组3个生物学重复。

2.质谱分析:将上述细胞裂解,使用中性亲和素珠从细胞裂解液中下拉标记蛋白。标记蛋白质经过胰蛋白酶消化。使用DIA-MS方法进行更稳定可靠的蛋白定性定量

研究结果:

通过DIA-MS分析,GLP-1-APEX2处理后,在INS-1E β细胞和SK-N-SH细胞中分别鉴定到1205和1287个邻近标记细胞膜蛋白,且实验组与对照组存在显著差异。

比较GLP-1-APEX2探针组与对照组、探针组与竞争组:在INS-1E β细胞中,探针组富集到294种GLP-1R的潜在细胞膜互作蛋白,而130种的标记强度被GLP-1竞争。这些数据帮助确定了GLP-1R的潜在互作蛋白,并且,GLP-1-APEX2探针在不同细胞类型中揭示了不同的GLP-1R互作网络,反映了细胞特异性。

韦恩图分析探针识别的潜在互作蛋白与竞争蛋白的overlap:在INS-1E β细胞中108种以及在SK-N-SH细胞中16种。确定了特定细胞类型的GLP-1R互作蛋白,揭示了特异性的细胞膜蛋白相互作用。

将识别的GLP-1R互作蛋白与BioGRID数据库中的已知互作蛋白进行对比。结果仅发现4个已知的GLP-1R互作蛋白(GABBR2, ATP1B1, SLC3A2, TFRC)。说明该研究发现了大量新的GLP-1R互作蛋白。

二、绘制动态的细胞膜相互作用网络

实验方法:

1.邻近标记:用GLP-1–APEX2探针处理INS-1E β细胞,分析不同时间点(从5分钟到60分钟)的互作蛋白,以研究时间对互动网络的影响。处理后用物素标记细胞膜上的邻近蛋白质。

2. 质谱分析:如前所述,采用DIA-MS方法对不同时间点的处理样本进行稳定准确的蛋白组定量检测。

3.免疫荧光成像:观察不同时间点的细胞表面标记信号,以评估标记的特异性和动态变化。

研究结果:

成像结果:在所有时间点上都能看到明显的细胞表面标记信号,这些信号在对照组和探针竞争条件下均未出现,说明标记的特异性。并且这一标记随着时间的推移显示出逐渐减少的趋势。

互作蛋白的强度动态变化:GLP-1R自身强度随时间逐渐降低;新发现的功能性互作蛋白Atp1b3、Slc4a4和Gipr在15分钟时强度立即下降而Gpc4在15钟时达到最低强度,之后逐渐上升。

互作蛋白的动态趋势聚类:据互作蛋白的强度变化将其分类为四个不同的簇。大多数互作蛋显示出强度随时间降低;少数互作蛋白表现强度的波动或上升趋势。

绘制动态细胞膜蛋白互网络: 该研究开发的基于配体的邻近标记方法不仅揭示了新的GLP-1R调控因子,并且绘制了GLP-1R在INS-1E β细胞中的动态细胞膜蛋白互作网络。这些作蛋白的动态变化可能与受体激活和内吞过程有关。

好了,以上就是今天的内容。该文章通过将基于配体的邻近标记技术和质谱蛋白组方法结合,深入分析了糖尿病药靶——GLP-1R的内源性细胞膜互作蛋白,揭示了细胞异质性的调控,并发现了一些新的功能调控因子,同时绘制了动态互作网络。

假如你正在或者将要开展蛋白-蛋白互作、药物-靶标互作、小分子/代谢物-蛋白互作等各种互作的课题,可以联系我们,我们一同探讨试验方案

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