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title: "Limited Proteolysis (LiP)--基于蛋白组大规模研究蛋白构象变化"
author: "omicsolution"
account: "omicsolution"
published_at: "2018-08-12T20:42:30+08:00"
captured_at: "2026-08-24T11:50:18.754945+08:00"
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# Limited Proteolysis (LiP)--基于蛋白组大规模研究蛋白构象变化
![图片 1](images/001.gif)

LiP技术

许多外界干扰都能影响蛋白质的构象，诸如热刺激，蛋白-蛋白相互作用，化合物结合，翻译后修饰等。蛋白构象的变化包括局部波动，形成更大的结构域，折叠构象与非折叠构象，或者单体与多体间的转换等。蛋白结构的变化会影响蛋白功能，例如变构酶的结构变化调控酶的活性。在淀粉样变性病以及一些神经退行性疾病中，某些蛋白的结构变化会导致其形成不溶性沉淀，对细胞及组织造成伤害。

X-ray 结晶、核磁共振（NMR）以及各种光谱学技术能够在体外研究简单蛋白体系的构象变化，却不能胜任复杂生物体系。Forster共振能量转移（FRET）以及细胞内的NMR技术能够在体内监测特定蛋白的构象变化，但这两种技术都需要对蛋白进行标记，不适合大规模研究。基于质谱的蛋白质组学通常被用来研究蛋白丰度的变化，翻译后修饰以及蛋白-蛋白相互作用，殊不知该技术也能高通量研究复杂生物体系中的蛋白结构的变化，而实现该目的需要结合由瑞士分子系统生物研究所（ETH）的Paola Picotti团队开发的limited proteolysis （LiP）技术。

本文就为您介绍如何结合该技术及SRM、PRM、DDA、DIA等蛋白质组学技术研究蛋白结构的变化？

LiP-MS原理

LiP-MS检测蛋白构象变化的关键在于LiP技术。该技术的核心是让蛋白处于天然构象的条件下，用广谱性的蛋白酶对其进行酶切。当蛋白构象发生变化时（例如与小分子结合），会暴露出不同的广谱性蛋白酶酶切位点，产生不同的蛋白酶切片段。一次酶切后再将蛋白样品变性，用胰酶进行二次酶切。通过质谱检测，比较不同处理条件的样品中，全酶切及半酶切肽段（LiP酶切）的信号强度变化，进而分析蛋白构象变化（图1）。

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图1. 不同构象下，全酶切肽段与半酶切肽段信号强度比较

LiP-MS工作流程

LiP 样品制备（举例细胞样品）：

1. 准备不同处理条件下的样品。Condition1, Condition2, Condition3…

2. 非变性条件下提取蛋白。

细胞裂解液可以选择50mM Hepes, 150mM KCl, 1mM MgCl2, 100mM β-glycerophosphate, 50mM NaF, pH 7.3。机械力破碎或者反复冷冻破碎。3000g，4s℃，离心2min，收集上清。

3. 向蛋白样品中加入广谱性的蛋白酶。

例如蛋白酶K（常用），thermolysin (嗜热菌蛋白酶)，subtilisin (枯热杆菌蛋白酶)、papain(木瓜蛋白酶)、糜蛋白酶(chymotrypsin)、或者弹性水解酶(elastase)。这些蛋白酶倾向于剪切未折叠的蛋白区域。酶与蛋白样品的比例要低，例如1:100。酶解时间要短，例如室温酶解5min。在广谱性蛋白酶作用下，这些非变形的蛋白样品会被切割成大的蛋白片段（图2中红色箭头为广谱性酶作用位点）。

4. 蛋白变性，终止酶解反应。

向非变性的蛋白样品中，加入盐酸胍酶至终浓度为7.4M，并且加热3min, 使蛋白样变性并且终止广谱性酶的酶解反应。

5. 胰酶酶解。

将上述变性的蛋白样品按常规流程进行还原、烷基化、胰酶酶解，即加入12.5Mm DTT, 37℃，30min，加入40mM IAA, 室温避光反应45min。样品用100mM NH4CO3 将盐酸胍酶稀释至0.5M, 按酶与底物1:100 (w/w) 加入测序级胰酶，37℃，反应2h，之后再次加入等量胰酶，37℃酶解过夜。

6. 酶解终止。向样品中加入甲酸至pH<3，肽段脱盐干燥，质谱检测。

7. 需要注意的是，每个条件下蛋白样品均需要设定一个对照组，该对照组仅按照常规蛋白组样品制备流程进行变性、还原、烷基化和胰酶酶解（步骤5）。该对照组用于后续数据分析的归一化。不同条件下蛋白构象的变化，在两步酶切中，会产生不同酶切形式的肽段，通过比较肽段的不同酶切模式，可以研究蛋白构象的变化（图2）。

Mass Spectrometry 检测：

LiP得到的肽段样品，根据实验目的，可以依赖多种质谱检测手段进行检测，包括大规模筛选模式（DDA，DIA）,或者靶向模式（SRM，PRM）。液相梯度按照常规2~3h分离，质谱检测参数按照常规DDA，DIA, SRM 及PRM 检测模式设置。搜库软件及参数也同常规。需要注意的是，搜库参数中，胰酶酶切需要设定为半酶切模式。定量时选择半酶切且没有漏切的unique肽段，差异倍数至少2倍以上，q<0.02。通常经DDA/DIA筛选得到的构象变化的肽段，需要经靶向验证。

1. Label free DDA 定量：可采用spectra counting 模式，也可采用峰面积模式。

2. DIA定量：采用峰面积模式。

3. SRM、PRM：采用子离子的峰面积模式。

![图片 3](images/003.jpg)

图2. LiP 工作流程

Condition1中的蛋白暴露出蛋白酶K的酶切位点，因此在质谱中可以检测到两个半酶切的肽段。

LiP-MS技术研究蛋白构象的优势

1. 研究体系可以为复杂生物样本，例如细胞、血液、组织。

2. 样本不需要经过富集、提纯及标记。目前在人源细胞中，可检测到约3500个LiP切割位点，包含约1200个蛋白。

3. 可以联合多种质谱检测技术：靶向（PRM,SRM）,定性定量（DDA, DIA）。

4. 可以研究特定蛋白的构象变化，也可以高通量研究蛋白网络中的构象变化。

5. 检测灵敏度高，可以检测显著的结构变化，也可以检测微小的结构变化。如果结合更长色谱梯度，可以检测低丰度蛋白的构象变化。

LiP-MS技术的应用

1. 分析翻译后修饰引起的蛋白构象变化；

2. 分析蛋白酶活性的变化（构象变化会导致酶活性的改变）；

3. 分析蛋白-蛋白相互作用及网络；

4. 分析蛋白-（代谢、药物）小分子的相互作用及网络；

5. 疾病生物标志物发现（例如神经退行性疾病，淀粉样蛋白/可溶性蛋白的比例）。

LiP-MS技术应用中的注意要点

1. LiP技术必须在非变性条件对蛋白进行酶切，因此只适合与可溶性蛋白，对膜蛋白不适用。

2. 同一体系中，如果某一蛋白存在多种构象，Lip-MS无法区分各个构象。

3. 某些蛋白无论处于何种构象，对LiP剪切都不敏感，因此无法进行构象分析

Biognosys 拥有LiP的专利技术，在不久的将来，将会推出商业化的产品为科研领域提供技术支持。该部分在正式购买我们的方案后另行培训，如在试用阶段需要了解结果质量，欢迎联系我们：Support@omicsolution.com。

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Omicsolution

Omicsolution致力于蛋白质组学新技术、新方法在中国的推广和实践。我们团队成员拥有超过10年的蛋白质组学信息技术、仪器技术和实验技术经验。与赛默飞世尔蛋白质组学团队紧密合作，为国内蛋白质组学实验室快速吸收、发展国际先进软硬件技术保驾护航。

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目前我们的团队成员来自于复旦大学蛋白质组学中心、上海交通大学系统生物研究院、中科院上海生命科学研究院等院校机构，从2005年起就从事蛋白质组学及信息学研究，我们的技术团队经验丰富、创新进取，紧跟学术界最新发展。

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