易肽EasyPeptTM PTM
糖基化富集试剂盒
货号：OSFP0007-200μg 规格：48x 版本号：V20260609
试剂盒包含
| 试剂名称 | 规格 | 简 介 | 储存条件 |
| 试剂0 ● | 20 ml*1 | 裂解液，用于蛋白裂解 | 常温 |
| 试剂A ● | 1.8 ml*6 | 还原烷基化及酶解体系，也可用于蛋白裂解 | 常温 |
| 试剂B ● | 110 μl*6 | 还原烷基化，蛋白质还原烷基化 | -20℃ |
| 试剂C ◌ | 180 μl*6 | 平衡液，调节酶解体系 | -20℃ |
| 试剂D ● | 450 μl*6 | 酶，蛋白酶解 | -20℃ |
| 试剂E ● | 270 μl*6 | 终止试剂，终止酶解反应 | 常温 |
| 试剂H ● | 1.2ml*6 | 除盐洗脱试剂 | 常温 |
| 试剂F ● | 60ml*1 | 肽段清洗 | 4℃ |
| 试剂G ● | 7.5ml*1 | 肽段清洗 | 4℃ |
| 试剂I | 500ul*1 | 调整体系 | 常温 |
| Cartridge | 200 μg载量*48 | 肽段脱盐 | 常温 |
| EnrichmentTip | 200 μg载量*48 | 肽段富集 | 常温避光 |
| Adaptor | 24 | Cartridge、EnrichmentTip适配器（仅在首次购买试剂盒时附赠） | 常温 |
试剂盒简介
样品制备是蛋白质组学实验最重要的步骤之一，合适的前处理过程是实验成功的关键。尤其翻译后修饰组学，由于含量低、不稳定的特性，对样本的保存、制备条件要求更为严格。
易肽Glyc糖基化富集试剂盒旨在以较低的样本初始量、较少的样品制备步骤和较短的操作时间获得最佳的实验结果。适用于组织、细胞等样本类型，尤其对于大队列样本的制备过程充分体现出其高通量、高稳健性的优势。该试剂盒提供糖基化多肽制备包括蛋白变性、还原烷基化、蛋白酶解、肽段脱盐以及肽段富集过程的相关试剂。基于溶液内快速酶解的前处理方法，解决了传统方法样本用量多、试剂成本高、损失大、耗时长的弊端，仅需2-3小时即可完成肽段制备的步骤，且平行性好。基于离心式的肽段富集过程，操作简便，1h之内即可完成肽段富集，以实现微量糖基化肽段的快速制备及深度覆盖检测。
需要准备的试剂耗材
3.1 设备
| 设备名称 | 简 介 | |
| 移液器 |  |
吸取蛋白提取过程中的蛋白上清，减少污染物，提高蛋白定量准确度 |
| 恒温混匀仪 |  |
提供95℃及37℃的恒温条件，促进蛋白质的裂解与酶解 |
| 高通量组织研磨仪 |  |
不同组织样本的破碎，抽提蛋白质 |
| 冷冻/常温离心机 |  |
冷冻离心机用于蛋白提取，常温离心机用于肽段脱盐，适配器支持1.5/2ml离心管 |
| 真空离心浓缩仪 |  |
脱盐后的肽段干燥 |
3.2 试剂
Trifluoroacetic acid (TFA)
Acetonitrile (ACN), LC-MS Grade
Water, LC-MS Grade
Methanol (MeOH), Optima™ LC-MS Grade
Low Protein Binding Microcentrifuge Tubes, 2.0 mL/1.5mL
4. 试剂准备
Condition buffer：70%ACN，0.2%TFA，每个样本需要200μl，20μl TFA加入到2.98ml超纯水和7ml无水乙腈中，混匀；
Wash buffer：0.2%TFA，每个样本需要600μl，72μl TFA加入到35.928ml超纯水，混匀；
5. 操作过程
5.1 蛋白提取
对于细胞样本，细胞沉淀中加入适量试剂 0（建议细胞量不要超过2E6。参考体积比，细胞沉淀：试剂0约 1:5），200μl枪头反复吹打15-20次，金属浴95℃加热5min（95℃，1000rpm）；
注：样品出现粘稠时可使用超声波细胞破碎仪冰上超声2 min （25-30Hz ,每10s停10s）；
对于组织样本，取适量组织样品加入试剂0（按1：8的比例加入试剂0，即25mg组织加入200μl试剂0），高通量组织研磨仪震荡研磨3次，金属浴95℃加热5min（95℃，1000rpm）；
4℃，14000g 离心 20min，取上清；
上清进行 BCA 蛋白定量；
根据定量结果，建议取300μg 蛋白样品进行后续操作。
5.2 蛋白酶解
a. 步骤5.1 d中得到的蛋白溶液（建议总体积不超过200μl，血浆样本直接取原始样本进行后续实验），加入试剂A 200 μl，吹打混匀；
b. 加入12μl试剂B混匀后95℃加热5min（95℃，1000rpm）；
c. 加热结束待样品恢复至室温后，分别加入20 μl试剂C及50μl试剂D，混匀，37℃酶解2H（37℃，800 rpm）；
d. 酶解结束后加入30 μl试剂E，混匀，终止酶解反应，此时会有沉淀出现，16000g离心5min吸取上清待后续脱盐。
5.3 肽段脱盐
脱盐柱活化：100μl甲醇加入到脱盐柱中，700g离心1min；
脱盐柱去杂质：200μl Condition buffer加入到脱盐柱中，700g离心1min；
脱盐柱平衡：200μl Wash buffer加入到脱盐柱中，700g离心1min；
加载样本：将样本全部加载到脱盐柱中，700g离心1min，重复操作一次；（加载样本前确保pH < 3，可使用20%TFA调pH＜3后加载样本）
脱盐柱清洗：200μl Wash buffer加入到脱盐柱中，700g离心1min，重复操作一次；
样本洗脱：将除盐柱转移到新的离心管中，70μl 试剂H加入到脱盐柱中，700g离心1min，洗脱两次，最终样本体积为140μl；
调整buffer体系：洗脱的样本中每管加入8μl试剂I，混匀后待富集。
5.4 肽段富集
将EnrichmentTip（富集柱）插入Adaptor上置于2ml离心管中；
150μl 试剂F加入到EnrichmentTip（富集柱）中，2600g离心3min，重复操作三次，即一共四次；
将放有EnrichmentTip（富集柱）的Adaptor转移至新的2ml离心管中；
加载样本：将样本全部加载到富集柱中，2400g离心3min，流穿液重复过柱三次，即样本一共过柱四次；
150μl 试剂F加入到EnrichmentTip（富集柱）中，2600g离心3min，重复操作五次，即一共六次；
样本洗脱：70μl 试剂G加入到EnrichmentTip（富集柱）中，2400g离心3min，重复操作一次，即一共洗脱两次；
真空离心浓缩仪浓缩样本（建议< 30℃）。
6. 注意事项
试剂0和试剂A低温下会析出，建议使用前置于水浴锅中（56℃）放置10min，待结晶重新溶解后混合均匀使用；
使用低吸附离心管，最大限度的提高样本回收率；
酶解结束后加入试剂E有大量沉淀出现属于正常情况，高速离心后即可进行后续实验；
样本比较难消化酶解时可适当加长酶解时间；
酶解后样本如不能及时进行后续脱盐处理，可-80℃存放2周；
避免样品污染及皮肤直接接触试剂，实验时戴好手套、口罩。
 |
官方网站：www.omicsolution.com 若有任何疑问，欢迎发送邮件至： support@omicsolution.com |